Tolerancia a la salinidad de festuca alta, naturalizada y comercial, libre e infectada con endófitos durante la germinación
DOI:
https://doi.org/10.24215/16699513e084Palabras clave:
Festuca arundinacea, Epichloë coenophiala, semilla, germinación, salinidadResumen
Se realizó un experimento en una cámara de germinación con el objetivo de comparar la tolerancia a la salinidad de distintos materiales de festuca alta (Schedonorus arundinaceus) libres e infectados con el endófito Epichloë coenophiala durante la germinación. Se utilizó un diseño en bloques completos aleatorizados con tres repeticiones en el tiempo con arreglo factorial. Los factores experimentales fueron: 1) material genético de festuca alta, con cuatro niveles: población naturalizada libre (S-) e infectada (S+) con el endófito silvestre, y cv. Taita libre (T-) e infectado (T+) con el endófito seguro AR584, y 2) condición salina, con tres niveles: 0 (control), 40 y 80 mM NaCl. Se colocaron las semillas en rollos de papel embebidos en la solución salina correspondiente y se evaluaron variables asociadas a la germinación: energía germinativa (EG), poder germinativo (PG), longitud de coleoptilo (LC) y de radícula (LR), peso fresco (PF) y seco (PS) de plántulas. No se registró interacción entre los factores experimentales para ninguna de las variables (p>0,05). A medida que aumentó la salinidad, disminuyó el PG en todos los materiales evaluados, mientras que la EG y la LC únicamente disminuyeron en 40 y 80 mM NaCl, respectivamente. Los materiales de festuca alta presentaron valores similares de EG, LC, LR y PF. Sin embargo, S+ presentó el mayor PG, que no difirió del de S-. Las plántulas de T+ registraron el menor PS. Los resultados obtenidos indican que los materiales de festuca alta estudiados no diferirían en la tolerancia a la salinidad.
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Agnusdei, M.G. & O. Di Marco. (2014). Más producción de carne, menos riesgo y más flexibilidad con pasturas perennes en suelos bajos. Guía práctica para su implementación. Disponible en: https://inta.gob.ar/sites/default/files/script-tmp-inta_cartilla_ colombo_y_magliano_ult.pdf. Último acceso: febrero de 2021.
Bahizire, F.B. (2007). Effect of salinity on germination and seedling growth of canola (Brassica napus L.). Thesis for the degree of Master of Agricultural Sciences at the University of Stellenbosch, Southafrica. 73 pp.
Batista, W.B. & R.J.C. León. (1992). Asociación entre comunidades vegetales y algunas propiedades del suelo en el centro de la Depresión del Salado. Ecología Austral 2: 47-55.
Batista, W.B.; R.J.C. León & S.B. Perelman. (1988). Las comunidades vegetales de un pastizal natural de la Región de Laprida, Prov. de Buenos Aires, Argentina. Phytocoenologia 16: 465-480.
Bazzigalupi, O.; S. Pistorale & A. Andrés. (2008). Tolerancia a la salinidad durante la germinación de semillas provenientes de poblaciones naturalizadas de agropiro alargado (Thinopyrum ponticum). Ciencia e Investigación Agraria 35: 277-285.
Belanger, F.C. (1996). A rapid seedling screening method for determination of fungal endophyte viability. Crop Science 36: 460-462.
Borrajo, C.I. & S.I. Alonso. (2004). Germinación, emergencia e implantación de variedades experimentales de agropiro alargado. Revista Argentina de Producción Animal 24 (1-2): 29-40.
Bourguignon, M.; J.A. Nelson; E. Carlisle; H. Ji; R.D. Dinkins; T.D. Phillips & R.L. McCulley. (2015). Ecophysiological responses of tall fescue genotypes to fungal endophyte infection, elevated temperature, and precipitation. Crop Science 55: 2895-2909.
Bouton, J.R.; R. Gates; N. Hill & C. Hoveland. (2002). Agronomic traits with MaxQ tall fescue. pp. 40-41. Proc. Tall Fescue Toxicosis Workshop, SERAIEG-8, Wildersvillle, TN.27-29 Oct. 2002. Missouri Forage and Grassland Council.
Burkart, S.B.; R.J.C. León & C.P. Movia. (ex aequo). (1990). Inventario fitosociológico del pastizal de la Depresión del Salado (Prov. de Bs. As.) en un área representativa de sus principales ambientes. Darwiniana 30: 27-69.
Cardamone, L.; A. Cuatrín; K. Grunberg & M.A. Tomás. (2018). Variability for salt tolerance in a collection of Panicum coloratum var. makarikariense during early growth stages. Tropical Grasslands 6: 134-147.
Casas, R.R. (2013). Recuperación de suelos salino-sódicos en áreas de secano. ACAECER 38: 10-19.
Chaneton, E.J. (2016). Modelos ecológicos aplicados al manejo de pastizales naturales. VII Congreso Nacional de Manejo de Pastizales Naturales, X Encuentro de Ganaderos del Pastizal del Cono Sur. pp. 23-26.
Cheplick, G.P.; K. Clay & S. Marks. (1989). Interactions between infection by endophytic fungi and nutrient limitation in the grasses Lolium perenne and Festuca arundinacea. New Phytologist 111: 89-97.
Clay, K. (1987). Effects of fungal endophytes on the seed and seedling biology of Lolium perenne and Festuca arundinacea. Oecologia 73: 358-362.
Clay, K. & C. Schardl. (2002). Evolutionary origins and ecological consequences of endophyte symbiosis with grasses. American Naturalist 160: 99-127.
Colabelli, M.N.; L. Salomone; F. Fernández & S. San Martino. (2006). Niveles de infección de Neotyphodium coenophialum en poblaciones de festuca naturalizadas en el sudeste bonaerense. Revista Argentina de Producción Animal 26 (Supl. 1): 239-240.
Di Bella, C.E.; G.G. Striker; J. Loreti; D.J. Cosentino & A.A. Grimoldi. (2016). Soil water regime of grassland communities along subtle topographic gradient in the flooding pampa (Argentina). Soil and Water Reserch 11: 90-96.
Elizalde, J. & S. Riffel. (2015). Alertan sobre festucosis en la Cuenca del Salado. Disponible en: http://www.valorcarne.com.ar/alertan-sobre-festucosis-en-la-cuenca-del-salado. Ultimo acceso: marzo de 2016.
Flowers, T.J.; R. Munns & T.D. Colmer. (2015). Sodium chloride toxicity and the Francois, L.E. & E.V. Maas. cellular basis of salt tolerance in halophytes. Annals of Botany 115: 419-431.
Francois, L.E. & E.V. Maas. (1993). Crops Response and management on salt affected soils. In: Plant and Crops Stress. Mohammad Pessarakli Ed. Univ. Of Arizona. Tucson, Arizona. Cap. 7. pp 149-181.
García, J.A.; J.C. Cantón; B.L. García; J.F. Micheloud; C.M. Campero; E.J.A. Spath & E.R. Odriozola. (2017). Retrospective analysis of cattle poisoning in Argentina (2000-2013). Revista Pesquisa Veterinária Brasileira 37: 210-214.
Gentos. (2019). Festuca TAITA. Disponible en: http://gentos.com.uy/wp-content/uploads/2013/12/Folleto_Gentos_TAITA.pdf. Último acceso: diciembre de 2019.
Gundel, P.E.; L.I. Pérez; M. Helander & K. Saikkonen. (2013). Symbiotically modified organisms: nontoxic fungal endophytes in grasses. Trends Plant Science 18: 420-427.
Gundel, P.E.; J.A. Rudgers & K.D. Whitney. (2017). Vertically transmitted symbionts as mechanisms of transgenerational effects. American Journal of Botany 104(5): 787-792.
Harivandi, M.A.; J.D. Butler & P.M. Soltanpour. (1982). Salt influence on germination and seedling survival of six cool season turfgrass species. Communications in Soil Science Plant Analysis 13: 519-529.
Hopkins, A.A.; C.A. Young; D.G. Panaccione; W.R. Simpson; S. Mittal & J.H. Bouton. (2010). Agronomic performance and lamb health among several tall fescue novel endophyte combinations in the south-central USA. Crop Science 50: 1552-1561.
International Seed Testing Association. (2008). International Rules for Seed Testing. ISTA. Bassersdorf, 280 pp.
Jauregui, C.G.; M.A. Ruiz & R.D. Ernst. (2017). Tolerancia a la salinidad en plántulas de agropiro criollo (Elymus scabrifolius) y agropiro alargado (Thinopyron ponticum). Pastos y Forrajes 40(1): 29-36.
Johnson, L.; A. De Bonth; L. Briggs; J. Caradus; S. Finch; D. Fleetwood; L. Fletcher; D. Hume; R. Johnson; A. Popay; B. Tapper; W. Simpson; C. Voisey & S. Card. (2013). The exploitation of epichloae endophytes for agricultural benefit. Fungal Diversity 60: 171-188.
Koch, E.D.; J. Honig; J. Vaiciunas; W.A. Meyer & S.A. Bonos. (2017). Effect of Endophyte on Salinity Tolerance in Perennial Ryegrass. International Turfgrass Society Research Journal. 13: 459-465.
León, R.J.C.; S.E. Burkart & C.P. Movia. (1979). Relevamiento Fitosociológico del Pastizal del Norte de la Depresión del Salado: La Vegetación de la República Argentina. Serie Fitogeográfica N° 17. Buenos Aires, INTA, 90 pp.
Leuchtmann, A.; C.W. Bacon; C.L. Schardl; J.F. White & M. Tadych. (2014). Nomenclatural realignment of Neotyphodiumspecies with genus Epichloë. Mycology 106: 202-215.
Lugtenberg, B.J.J.; J.R Caradus & L.J. Johnson. (2016). Fungal endophytes for sustainable crop production. Microbiology Ecology 92: 1-17.
Lyons, P.C.; J.J Evans & C.W. Bacon. (1990). Effects of the fungal endophyte Acremonium coenophialum on nitrogen accumulation and metabolism in tall fescue. Plant Physiology 92: 726-732.
Maas, E.V. (1986). Salt tolerance of plants. International Journal of Applied Agricultural Research 1: 12-26.
Maddaloni, J. & L. Ferrari. (2005). Festuca alta. En: Forrajeras y pasturas del ecosistema templado húmedo de la Argentina (Forage species and pastures of the humid temperate ecosystem of Argentina). Maddaloni, J. & L. Ferrari (eds). Universidad Nacional de Lomas de Zamora, Bs. As., Argentina. pp. 165-182.
Maguire, J. (1962). Speed of germination aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science 2: 176-177.
Malinowski, D. & D. Belesky. (2000). Adaptations of endophyte-infected cool-season grasses to environmental stresses: mechanisms of drought and mineral stress tolerance. Crop Science 40: 923-940.
Marcum, K.B. (2002). Growth and physiological adaptations of grasses to salinity stress. In: Handbook of Plant and Crop Physiology. M. Pessaraki (ed.). pp. 623-626.
McCue, K.F. & A.D. Hanson. (1990). Drought and salt tolerance: towards understanding and application. Trends in Biotechnology 8: 358-362.
Mazzanti, A.; J. Castaño; C. Sevilla & J. Orbea. (1992). Características agronómicas de especies y cultivares de gramíneas y leguminosas forrajeras adaptadas al sudeste de la Provincia de Buenos Aires. INTA. Centro Regional Buenos Aires Sur. EEA Balcarce. 73 pp.
Miaczynski, C. (1995). Los suelos hidromórficos e hidrohalomórficos de la provincia de Buenos Aires. Revista de la Facultad de Agronomia de la UBA 15: 23-36.
Moscatelli, G. (1991). Los Suelos de la Región Pampeana. En: Barsky, O. (Ed.). El desarrollo Agropecuario pampeano. Editorial Grupo Editores Latinoamericanos, INTA, ICCA, INDEC. pp. 11-75.
Munns, R. (2002). Comparative physiology of salt and water stress. Plant, Cell & Environment 25: 239-250.
Munns, R. & M. Tester. (2008). Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology 59: 651-681.
Munns R. & M. Gilliham. (2015). Salinity tolerance of crops – what is the cost? New Phytologist 208: 668-673.
Nosquese, M.A. (2017). Efectividad de diferentes métodos de remoción de hongo endófito asintomático en semillas de festuca alta. Tesis de grado. Facultad de Ciencias Agrarias, UNMdP. Balcarce, Argentina. 51 pp.
Omacini, M.; E. Chaneton; C. Ghersa & C. Muller. (2001). Symbiotic fungal endophytes control insect host-parasite interaction webs. Nature 409: 78-81.
Paruelo, J.M. & O.E. Sala. (1990). Caracterización de las inundaciones en la Depresión del Salado (Buenos Aires, Argentina): Dinámica de la capa freática. Turrialba 40 :5-11.
Petigrosso, L.R.; M.N. Colabelli; O.N. Fernández; V. Ispizúa & M.G. Cendoya. (2013). Incidence of the endophyte fungus Neotyphodium coenophialum in pastures of tall fescue differing in age and soil characteristics. African Journal of Agricultral Research 8: 2655-2662.
Pittaro, G.; L. Cáceres; C. Bruno; A. Tomás; D. Bustos; M. Monteoliva; L. Ortega & E. Taleisnik. (2015). Salt tolerance variability among stress-selected Panicum coloratum cv. Klein plants. Grass and Forage Science 71: 683-698.
Principi, M.A.; R.R. Mattana; O.P Cardinali & J.L Colodro. (2011). Diseño y prestaciones de un prototipo de siembra directa para intersiembra de pasturas. Revista de Investigaciones Agropecuarias 37: 54-61.
R Core Team. (2018). R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. Disponible en http://www.R-project.org/. Ultimo acceso: agosto de 2018.
Reza Sabzalian, M. & A. Mirlohi. (2010). Neotyphodium endophytes trigger salt resistance in tall and meadow fescues. Journal of Plant Nutrition and Soil Science 173: 952–957.
Rodríguez, A. & E. Jacobo. (2012). Manejo de pastizales naturales para una ganadería sustentable en la Pampa Deprimida. Buenas prácticas para una ganadería sustentable del pastizal. Fundación Vida Silvestre Argentina, Aves Argentinas. 1ª. ed. Buenos Aires. Argentina. 104 pp.
Roitman, G. & P. Preliasco. (2018). Guía de reconocimiento de herbáceas de la Pampa Deprimida. Buenas prácticas para una ganadería sustentable de pastizal. Características para su manejo. Disponible en: https: //www.avesargentinas.org.ar/sites/default/files/kit_pampas__guia__de_reconocimiento_de_herbaceas_de_la_pampa_deprimida_segunda_edicion.pdf. Ultimo acceso: marzo de 2021.
Ruiz, M. & O. Terenti. (2012). Evaluación comparativa de cuatro especies forrajeras bajo condiciones de estrés hídrico y salino durante la germinación. Agriscientia 29: 91-97.
Saha, C.D.; M.A. Jackson & J.M. Johnson-Cicalese. (1988). A rapid staining method for detection of endophytic fungi in turf and forage grass. Phytopathology 78: 237-239.
Saikkonen, K.; P. Gundel & M. Helander. (2013). Chemical ecology mediated by fungal endophytes in grasses. Journal of Chemical Ecology 39: 962-968.
Sandhu, D.; M.V. Cornacchione; J.F.S. Ferreira & D. L. Suarez. (2017). Variable salinity responses of 12 alfalfa genotypes and comparative expression analyses of salt response genes. Scientific Reports 7: 42958.
Schardl, C.L. (2009). Fungal endophytes in Lolium and Festuca species. En: Molecular Breeding of Forage and Turf. Yamada T. and G. Spangenberg (eds). NY: Springer Science & Bussiness Media, New York. pp. 285-298.
Schardl, C.L. & T.D. Phillips. (1997). Protective grass endophytes. Where are they from and where are they going? Plant Disease 81: 430-438.
Schardl, C.L.; C.A. Young; J. Pan; S. Florea; J.E. Takach; D.G. Panaccione; M.L. Farman; J.S. Webb; J. Jaromczyk; N.D. Charlton; P. Nagabhyru; L. Chen; C. Shi & A. Leuchtmann. (2013). Currencies of mutualisms: sources of alkaloid genes in vertically transmitted Epichloe. Toxins 5: 1064-1088.
Serena, M.; B. Leinauer; R. Sallenave; M. Schiavon & B. Maier. (2012). Media selection and seed coating influence germination of turfgrasses under salinity. HortScience 47(1): 116-120.
Sfeir, A.J. (2015). Provincia de Buenos Aires. En: Casas, R. & Albarracin, G. (eds): El deterioro del suelo y del ambiente en Argentina. Erosión y degradación de Suelos. Tomo II, Parte 7. pp. 31.
Shabala, S.; J. Bose & R. Hedrich. (2014). Salt bladders: do they matter? Trends in Plant Science 19: 687-691.
Shannon, M. C. (1997). Adaptation of plant to salinity. Advances in Agronomy 60: 75-120.
Song, M.L.; Q. Chai; X.Z. Li; X. Yao; C.J. Li; M.J. Christensen & Z.B. Nan. (2015). An asexual Epichloë endophyte modifies the nutrient stoichiometry of wild barley (Hordeum brevisubulatum) under salt stress. Plant Soil 387: 153-165.
Soriano, A. (1991). Rio de la Plata Grasslands. In: R.T. Coupland (ed.) Ecosystems of the World 8A. Natural Grasslands. Introduction and Western Hemisphere, Elsevier. pp. 367-369.
Stefanoni Rubio, P.J. (2019). Efecto de Epichloë sobre la germinación y el rendimiento de Bromus auleticus bajo condiciones de estrés y en asociación a hongos solubilizadores de fósforo. Tesis Doctoral. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Biodiversidad y Biología Experimental. 165 pp.
Tal, M. (1985). Genetics of salt tolerance in higher plants: theoretical and practical considerations. Plant Soil 89: 199-226.
Taleisnik, E. (2014). Estrés abiótico, plantas y sus patologías: un triángulo de relaciones complejas. Tercer Congreso de la Red Argentina de Salinidad. Disponible en: https://www.conicet.gov.ar/new_scp/detalle.php?keywords=&id=31552&congresos=yes&detalles=yes&congr_id=2775219. Último acceso: septiembre de 2020.
Taleisnik, E.; K. Grunberg & G. Santa María. (2007). La salinización de suelos en la Argentina Editorial EDUCC. Córdoba. ISBN: 978-987-626-013-8. Disponible en: https://redsalinidad.com.ar/wp-content/uploads/2018/12/la-salinizacion-de-suelos-en-la-argentina.pdf. Último acceso: octubre de 2020.
Turan, S.; K. Cornish & S. Kumar. (2012). Salinity tolerance in plants: breeding and genetic engineering. Australian Journal of Crop Science 6: 1337-1348.
Ungar, I.A. (1978). Halophyte seed germination. The Botanical Review 44(2): 233-264.
Vázquez De Aldana, B.R.; A. Álvarez Martín; A. García Ciudad; I. Zabalgogeazcoa & B. García Criado. (2011). El hongo endofítico Epichloë festucae y la tolerancia al estrés salino en Festuca rubra. En:Pastos paisajes culturales entre tradición y nuevos paradigmas del siglo XXI. López Carrasco Fernández, C. et al. S.E.E.P: Toledo. pp. 183-188.
Wang, Z.; C. Li & J. White. (2020). Effects of Epichloë endophyte infection on growth, physiological properties and seed germination of wild barley under saline conditions. Journal of Agronomy and Crop Science 206: 43-51.
White, J.F.Jr.; G. Morgan-Jones & A.C. Morrow. (1993). Taxonomy, life cycle, reproduction and detection of Acremonium endophytes. Agriculture, Ecosystem & Environment 44: 13-37.
Yokoi, S.; F.J. Quintero; B. Cubero; M.T. Ruiz; R.A. Bressa; P.M. Hasegawa & J.M. Pardo. (2002). Differential expression and function of Arabidopsis thaliana NHX Na+/H+ antiporters in the salt stress response. Plant Journal 30: 529-539.
Zamolinski, A. (2000). Experiencia en recuperación de suelos salinizados. Argentina: INTA EEA General Villegas. Publicación Técnica N° 31. 14 pp.
Zhang, Q.; S. Wang & K. Rue. (2011). Salinity tolerance of 12 turfgrass in three germination media. HortScience 46: 651-654.
Zubiaur, I.M. (2016). Efecto de la infección endofítica sobre la tolerancia a la salinidad en poblaciones de raigrás anual (Lolium multiflorum Lam.) provenientes de ambientes de diferente calidad del sudeste bonaerense. Tesis de grado. Universidad Nacional de Mar del Plata, Facultad de Ciencias Agrarias. 41 pp.
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