Seroprevalencia de paratuberculosis bovina mediante la prueba de ELISA urea en rodeos de cría y de leche con sospecha de la enfermedad, localizados en la provincia de Buenos Aires, Argentina

  • María Fiorella Alvarado Pinedo CEDIVE. FCV. UNLP https://orcid.org/0000-0002-9729-6711
  • Leandro Adrián Di Paolo
  • Pedro Sebastián Sosa
  • Magali Andrea Romero
  • Luis María Peralta
  • Enrique Felix Costa
  • Gabriel Eduardo Travería
Palabras clave: Rumiantes, enfermedad de Johne, diagnóstico, ELISA urea

Resumen

Se presentan los resultados obtenidos en 17.747 sueros analizados para el diagnóstico serológico de paratuberculosis bovina, provenientes de 85 rodeos de cría y 5 de leche, ubicados en 14 partidos de la provincia de Buenos Aires. La prueba de ELISA permite diagnosticar esta enfermedad en estadio subclínico, y la incorporación de urea mejora la eficiencia para detectar los anticuerpos específicos contra el Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (MAP). Se estimó la seroprevalencia sobre la base de los resultados obtenidos de animales caracterizados como positivos y sospechosos en la prueba de ELISA urea. Se observó una seroprevalencia individual del 5,5 % en los rodeos de cría y del 13,6 % en los rodeos lecheros, siendo la seroprevalencia predial del 78,8 %. De 425 muestras de heces cultivadas se aisló MAP en el 67,6 % de los animales positivos, del 52,7 % de los sospechosos y del 7 % de los negativos por la prueba de ELISA urea. Mediante estadística bayesiana, el valor predictivo positivo de esta prueba fue de 0,61 y el valor predictivo negativo de 0,93. Nuestros resultados aportan información actualizada sobre la estimación de la seroprevalencia regional de paratuberculosis bovina, la cual es elevada, y confirma la utilidad de la prueba de ELISA urea, desarrollada localmente, en el diagnóstico y control de la enfermedad.

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Alinovi CA, Ward MP, Lin TL, Moore GE, Wu CC. 2009.Real-time PCR, compared to liquid and solid culture media and ELISA, for the detection of Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis. Veterinary Microbiology. 136(1-2):177-9. doi:10.1016/j.vetmic.2008.10.012.

Alvarado Pinedo MF. 2015. Posibilidades diagnósticas de la PPD aviar en la paratuberculosis bovina en animales jóvenes. Tesis de Doctorado en Ciencias Veterinarias, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad Nacional de La Plata. Disponible en: http://sedici.unlp.edu.ar/handle/10915/48228.

Albuquerque PPF, Santos AS, Souza Neto OL,Kim PC, Cavalcanti, Oliveira JM, Mota RA, Júnior JW. 2017. Detection of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in bovine milk from the state of Pernambuco, Brazil. Brazilian Journal of Microbiology. 48(1):113-7. doi: 10.1016/j.bjm.2016.10.010

Barkema HW, Orsel K, Nielsen SS, Koets AP, Rutten VPMG, Bannantine JP, Keefe GP, Kelton DF, Wells SJ, Whittington RJ, Mackintosh CG, Manning EJ, Weber MF, Heuer C, Forde TL, Ritter C, Roche S, Corbett CS, Wolf R, Griebel PJ, Kastelic JP, De Buck J. 2018. Knowledge gaps that hamper prevention and control of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection. Transboundary and Emerging Diseases. 65(1):125-48. doi: 10.1111/tbed.12723

Chiodini RJ, Van Kruiningen HJ, Merkal RS, Thayer WR Jr, Coutu JA.1984. Characteristics of an unclassified Mycobacterium species isolated from patients with Crohn's disease. Journal of Clinical Microbiology.20(5): 966-71.

Costa EF, Fazzio LE, Travería GE, Sánchez RO, Alvarado Pinedo MF, Mattioli GA, Otero MM, Chialva M, Romero JR. 2004. Causas de mortalidad y aborto en bovinos. Informe de 1163 casos entre 1986 y 2001 en la provincia de Buenos Aires. Revista de Medicina Veterinaria. 85:16-22.

Clarke CJ. 1997. The pathology and pathogenesis of paratuberculosis in ruminants and other species. Journal of Comparative Pathology.116(3):217-61. doi: 10.1016/s0021-9975(97)80001-1

Di Paolo LA, Alvarado Pinedo MF, Peralta LM, Romero MA, Travería GE. 2016. Paratuberculosis bovina: diagnóstico serológico con un ELISA urea para intentar categorizar el estadio de la enfermedad. En: XXI Reunión Científico Técnica de la Asociación Argentina de Veterinarios de Laboratorio de Diagnóstico. Jujuy, Argentina, p 79. Disponible en: http://www.aavld.org.ar/documentos/3-EMORIAS%20XXI%20AAVDL%202016.pdf [Consultado 20/01/2019]

Fialová L, Petráčková M, Kuchař O. 2017. Comparison of different enzyme-linked immunosorbent assay methods for avidity determination of antiphospholipid antibodies. Journal of Clinical Laboratory Analysis. 31(6). doi: 10.1002/jcla.22121

Gilardoni LR, Paolicchi FA, Mundo SL. 2012. Bovine paratuberculosis: a review of the advantages and disadvantages of different diagnostic tests. Revista Argentina de Microbiología. 44: 201-15.

Iddawela D, Ehambaram K, Kumarasiri PV, Wijesundera S. 2015. Development and validation of an enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) test for the diagnosis of toxoplasmosis in Sri Lanka. Ceylon Medical Journal. 60(3):82-6. doi: 10.4038/cmj.v60i3.8185

Jubb TF, Sergeant ES, Callinan AP, Galvin J. 2004. Estimate of the sensitivity of an ELISA used to detect Johne's disease in Victorian dairy cattle herds. Australian Veterinary Journal. 82(9):569-73.

Jungersen G, Mikkelsen H, Grell SN. 2012. Use of the johnin PPD interferon-gamma assay in control of bovine paratuberculosis. Veterinary Immunology and Immunopathology. 148(1-2):48-54. doi: 10.1016/j.vetimm.2011.05.010

Lynch HE, Stewart SM, Kepler TB, Sempowski GD, Alam SM. 2014. Surface plasmon resonance measurements of plasma antibody avidity during primary and secondary responses to anthrax protective antigen. Journal of Immunological Methods.404:1-12. doi: 10.1016/j.jim.2013.11.026.

Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. Chapter 3.1.15. 2018. Disponible en: http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.01.15_PARATB%20.pdf [Consultado 30/01/2019].

Maroudam V, Mohana Subramanian B, Praveen Kumar P, Dhinakar Raj G. 2015. Paratuberculosis: diagnostic methods and their constraints. Journal of Veterinary Science and Technology. 6:259. doi:10.4172/2157-7579.1000259

Moreno F, Frade V, Morsella C, Méndez A, Paolicchi F, Späth EJA. 2017. Análisis retrospectivo de paratuberculosis en establecimientos bovinos diagnosticados en INTA EEA Balcarce, Argentina, durante el periodo 1991-2015. En: Memorias de la Sociedad Iberoamericana de Epidemiología Veterinaria y Medicina Preventiva. Valdivia, Chile, p 35. Disponible en: http://www.sag.cl/sites/default/files/resumenes_sievmp_valdivia-2017.pdf [Consultado 14/01/2019].

Nielsen SS, Houe H, Thamsborg SM, Bitsch V. 2001.Comparison of two enzyme-linked immunosorbent assays for serologic diagnosis of paratuberculosis (Johne's disease) in cattle using different subspecies strains of Mycobacterium avium. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 13(2):164-6. doi: 10.1177/104063870101300213

Nielsen SS, Toft N. 2008. Ante mortem diagnosis of paratuberculosis: a review of accuracies of ELISA, interferon-gamma assay and faecal culture techniques. Veterinary Microbiology. 129(3-4):217-35. doi: 10.1016/j.vetmic.2007.12.011

Paolicchi FA, Zumarraga MJ, Gioffre A, Zamorano P, Morsella C, Verna A, Cataldi A, Alito A, Romano M. 2003. Application of different methods for the diagnosis of paratuberculosis in a dairy cattle herd in Argentina.Journal of Veterinary Medicine.Series B, Infectious Diseases and Veterinary Public Health. 50(1):20-6. doi: 10.1046/j.1439-0450.2003.00606.x

R Core Team. 2013. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria.URL http://www.R-project.org/. [Consultado 16/01/2019].

Risso MA, Risso P. 2017. Introducción a la estadística bayesiana: uso de lenguaje R y Winbugs. La Plata, La Plata, Vuelta a Casa.

Robin X, Turck N, Hainard A, Tiberti N, Lisacek F, Sanchez JC, Müller M. 2011. pROC: an open-source package for R and S+ to analyze and compare ROC curves. BMC Bioinformatics, 12, p. 77. doi:10.1186/1471-2105-12-77

Romero M, Alvarado Pinedo M, Moyano R, Peralta L, Sosa P, Santángelo M, Travería G. 2018. Medio de cultivo líquido para el diagnóstico de paratuberculosis bovina. Aplicación y análisis comparativo con el medio de Herrold: resultados preliminares. Analecta Veterinaria. 38(1):50-5. doi.org/10.24215/15142590e025

Späth EJA, Entrocasso CM, Plorutti F, Manazza JA, Brusca G, Faverín C. 2012. Enfermedades de los bovinos diagnosticadas por veterinarios en el centro-sur de Buenos Aires. Años 2001 a 2007. Boletín técnico N° 161, Estación Experimental Agropecuaria Balcarce INTA. Disponible en: http://inta.gob.ar/documentos/enfermedades-de-los-bovinos-diagnosticadas-por-veterinarios-en-el-centro-sur-de-buenos-aires.-anos-2001-al-2007 [Consultado 07/01/2019].

Stabel JR. 1997. An improved method for cultivation of Mycobacterium paratuberculosis from bovine fecal samples and comparison to three other methods. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 9(4):375–80. doi:10.1177/104063879700900406.

Suanes A, Rubino MC. 2012. Paratuberculosis bovina: diagnóstico, riesgos, impacto económico y estrategia de prevención. En: XL Jornadas Uruguayas de Buiatría. Paysandú, Uruguay, p. 66-72. Disponible en: http://centromedicoveterinariopaysandu.com/wp-content/uploads/2015/06/Suanes-et-al.-PARATUBERCULOSIS-BOVINA-DIAGNOSTICO-RIESGOS-IMPACTO-ECONOMICO-Y-ESTRATEGIA.-2012.pdf [Consultado 15/01/2019].

Sweeney RW. 1996. Transmission of paratuberculosis. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12(2):305–12. doi: 10.1016/S0749-0720(15)30408-4

Timms VJ, Mitchell HM, Neilan BA. 2015. Optimisation of DNA extraction and validation of PCR assays to detect Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis. Journal of Microbiological Methods. 112:99-103. doi:10.1016/j.mimet.2015.03.016

Travería GE. 2003. Análisis antigénico del Mycobacterium paratuberculosis y diagnóstico de la paratuberculosis bovina mediante enzimoinmunoensayo (ELISA). Tesis de Doctorado en Ciencias Veterinarias, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad Nacional de La Plata.

Whittington RJ, Whittington AM, Waldron A, Begg DJ, de Silva K, Purdie AC, Plain KM. 2013.Development and validation of a liquid medium (M7H9C) for routine culture of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis to replace modified Bactec 12B medium. Journal of Clinical Microbiology. 51(12):3993-4000. doi: 10.1128/JCM.01373-13

Whitlock RH, Wells SJ, Sweeney RW, Van Tiem J. 2000. ELISA and fecal culture for paratuberculosis (Johne's disease): sensitivity and specificity of each method. Veterinary Microbiology. 77(3-4):387-98. doi: 10.1016/s0378-1135(00)00324-2.

Whitlock RH, Buergelt C. 1996. Preclinical and clinical manifestations of paratuberculosis (including pathology). Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12(2):345-56. doi: 10.1016/s0749-0720(15)30410-2

Publicado
2019-05-30
Cómo citar
Alvarado Pinedo, M. F., Di Paolo, L. A., Sosa, P. S., Romero, M. A., Peralta, L. M., Costa, E. F., & Travería, G. E. (2019). Seroprevalencia de paratuberculosis bovina mediante la prueba de ELISA urea en rodeos de cría y de leche con sospecha de la enfermedad, localizados en la provincia de Buenos Aires, Argentina. Analecta Veterinaria, 39(1), 032. https://doi.org/10.24215/15142590e032
Sección
Trabajos de Investigación